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过表达引物结构
  1. 寻找 CDS 序列

NCBI、Ensembl数据库均可以,本人更喜欢Ensembl:http://www.ensembl.org/index.html?redirect=no

2. 分析酶切位点:找出载体多克隆位点 MCS 有,而插入基因中无的酶切位点。

原因:如果序列中也有,酶切会把目的基因CDS序列切开

3. 添加保护碱基和 Kozak 序列

Kozak 序列(GCCACC AUG G)是真核生物 5’帽子结构后面的一段核酸序列,可以与翻译起始因子结合,介导含有 5’帽子结构的 mRNA 的翻译起始。对应原核生物的 SD 序列。核糖体可以识别这段序列,并且作为翻译起始位点。

一个案例

4. 验证引物是否适合 PCR: (不适合也没办法,载体引物的局限性),只看与目的基因互补配对的部分(目的基因 CDS 序列),引物 Tm 值也只计算与目的基因完全互补配对的部分。

5. PCR—>回收—>酶切—>连接—>转化—>筛选—>摇菌—>抽质粒

基因克隆引物设计小程序已整合到进哥的toolkit中,有疑问请留言:

9 Replies to “过表达引物设计简要原理及小工具”

  1. 老师您好,请问酶切位点的保护碱基只需要加5’一端吗?另一端的不需要加吗?(看到其他视频加了两端,所以想在这里请教一下)

  2. 视频中如果没有5‘端和3’端,过表达结果可能会异常过高或者过低,因为缺乏调控。请教一下,正常一般范围是多少。我用质粒过表达后,PCR结果提示上调大约5倍,这个属于过低吗?
    实验室有人用病毒过表达,他PCR结果是上调了50倍。
    还有想请教一下,瞬转之后进行PCR检测,使用的引物,就用正常目的基因的引物就可以吧。
    谢谢!

    1. 你好,RNA水平5倍确实不高,但是应该也够了,过低可能是转染效率过低所致,也就是只有少数细胞转进去了。如果有荧光可以看一下效率。病毒一般效率更高,所以上升倍数更高是正常的,

    1. 这个简单,找一个无关序列
      哈哈 其实就是人没有的序列,比如GFP绿色荧光蛋白,前提质粒上没有这个,其它任何人没有的都可以

    1. 哈哈 你可以试一下 反向互补和原序列一样的,常规酶切位点序列是回文序列。
      简单点说,不用你做任何变化,直接加5‘端即可’

  3. 你好!问一下,1.原核表达正向引物有必要加Kozak序列吗?
    2.NCBI上根据目的基因(900bp)设计引物,PCR扩增时发现产物片段短了200bp,可能是什么原因?谢谢!

    1. 你好,1.原核不用加的,这是真核表达需要的
      2. 可以先查一下目的基因有没有可变剪切产生的不同转录本,可能扩出的其它转录本,实在不清楚可以考虑测序先,PCR产物直接测 第二天就知道结果了

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